NeuroSU - Site du Fer à Moulin

Site du Fer à Moulin

La plateforme d’imagerie photonique et d’analyse d’image du Site du Fer à Moulin

Le service d’imagerie photonique met à la disposition des chercheurs des équipements performants et des compétences scientifiques en microscopie photonique (microscopie confocale, vidéo-microscopie et analyse d’image). Il fournit une assistance et une formation à la microscopie photonique, à l’acquisition et au traitement d’image. Nous adaptons et développons des outils pour le traitement et l’analyse quantitative des images produites (segmentation, reconnaissance de forme, reconstruction…).

Offre de services

  • Accès aux divers microscopes et stations d’acquisition et de traitement des images
  • Assistance et formation à l’acquisition et au traitement d’image
  • Conseil et développement méthodologiques pour l’acquisition et le traitement d’image
  • Contribution à des projets scientifiques faisant appel à des méthodes de microscopie photonique et d’analyse d’image

Accès, réservation, tarifs

Les conditions d’accès dépendent du niveau de formation des utilisateurs et de l’aide nécessaire à l’utilisation des appareils. Les utilisateurs doivent contacter le responsable pour toute inscription nouvelle.

Consultez les tarifs

Personnel

  • Theano Eirinopoulou (IR1, Inserm) Responsable
  • Mythili Savariradjane (AI, Sorbonne Université)

Equipement

Microscope confocal TCS SP5 II (Leica) sur microscope droit DM6000 stage avec des objectifs 10x, 40x (eau et huile), 63x et 100x, lasers 405, 476, 488, 514, 562, 633 nm, 3 détecteurs et 1 détecteur pour la transmission.
Vidéomicroscope rapide confocal avec disque de Nipkov (Spinning Disk). Tête CS20, HBO et lasers, sur un microscope Leica DMI4000 inversé, avec des objectifs 20x, 40x, 63x, et 100x, une platine motoriése x,y, une roue à filtres Lambda 10, une enceinte thermostatée, une caméra intensifiée. Pilotage Metamorph.
Vidéomicroscope DMIRE2, platine piézo motorisée x, y, z, objectifs 10x, 20x, 63x et 100x, roue à filtres d’excitation (CFP, YFP, GFP, DsRed), DIC, enceinte thermostatée, caméra intensifiée Roper Cascade, pilotage Metamorph.
Deux microscopes à fluorescence DM6000 (Leica) équipés d’une caméra CCD (Micromax et Coolsnap), entièrement motorisés. Filtres pour le DAPI, FITC/GFP, Cy3/Rhoda et Cy5, objectifs 10x, 20x, 40x, 63x et 100x, DIC. Pilotage lMetamorph. Possible acquisition automatique à plusieurs longueurs d’onde et « stitching ».
Microscope confocal compact FV10i (Olympus), avec des diodes laser 405, 473, 559 et 635 nm, des objectifs 10x et 60x, 2 détecteurs + 1 détecteur pour la transmission.
Macroscope MVX10 (Olympus) avec des objectifs 0,63x,1x, et 2x, et des filtres pour CFP, YFP, GFP et RFP.


Microscope à transmission et épifluorescenceProvis (Olympus) avec caméra couleur Coolsnap.
Logiciels d’analyse d’image et reconstruction 3D: Metamorph, Huygens, Imaris.


Contact

Responsable : Theano Eirinopoulou
Tél. : 01 45 87 61 72
Email : theano.eirinopoulou[@]inserm.fr